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  • 上海遠慕生物科技有限公司

    瓊脂糖凝膠電泳法檢測DNA及RNA的純度及濃度
    點擊次數:523 更新時間:2022-11-16

      1、DNA 的瓊脂糖凝膠電泳檢測

      (1)配制瓊脂糖凝膠

      ①稱取適量瓊脂糖,放入100mL錐形瓶中按膠濃度加入1倍 TAE 或 TBE 緩沖液,于微波爐或水浴中溶解。

     ?、谌刍沫傊抢鋮s至60℃,加入終濃度為0.5μg/mL 的 EB,混勻。

      ③將凝膠床水平放置,插入兩端的擋板,用滴管吸取少量的凝膠封好膠床邊緣。

      ④放入梳子,使梳齒高于底板0.5~1.0mm。

      ⑤倒入瓊脂糖凝膠溶液,其厚度為3~5mm,放置30~60min,使膠完/全硬化。

      ⑥去掉兩端的擋板,將膠床放入電泳槽中,加入電泳緩沖液,液面高出膠面1~2mm 小心拔出梳子,檢查樣品孔是否完整。

      (2)點樣

     ?、偃舛葹?1μg/μL 的 DNA 樣品5μL,與 5μL 溴酚藍于封口膜上混合。

     ?、谟?20μL 的移液器將樣品加入樣品孔內。操作時,可用右手持移液器,左手握住右手腕,左肘支撐桌面,防止點樣時右手晃動。

     ?、弁瑯硬僮鼽c上 DNA 分子量標準物。

      (3)電泳

      將電泳槽置冰箱或冷室中,蓋上電泳槽蓋,接通電源,樣品端接負極(DNA 向陽極移動),以 5V/cm 電壓電泳。

      (4)溴酚藍泳動至膠3/4距離時,可停止電泳,取出凝膠,置短波紫外線(254nm)下觀察。植物 DNA 樣品應呈現一條遷移率很小的整齊條帶,與分子量標準物的遷移率相比大致估計所提 DNA 的相對分子質量大小。

      DNA 樣品純度植物總(核)DNA 樣品應呈現一條遷移率很小的整齊條帶,質粒 DNA 應呈現三條不同構型的條帶,這時表明所提樣品較純。如果在溴酚藍前有彌散的熒光區出現,則表明樣品中存有 RNA 雜質,若所提總 DNA 或核 DNA 在0.5%瓊脂糖凝膠上不能形成清晰的條帶,而只是彌散一片,則表明 DNA 已嚴重降解。若所提質粒 DNA 樣品在質粒條帶上端還有熒光條帶(遷移率小于質粒 DNA 條帶),表明質粒 DNA 樣品中有染色體DNA 污染。

      DNA 分子大小與泳動距離相同的標準 DNA 條帶的相對分子質量相近。

      DNA 樣品量比較被測 DNA 樣品條帶與標準 DNA 樣品條帶的熒光強度,DNA 量相同時所產生的熒光強度相同。如以 λ-DNA 為標準樣品,其濃度為1μg/μL,上樣量為 2μL,植物總 DNA 樣品條帶的亮度與之相近時,其電泳樣品量約為2g,根據上樣體積可大致估計出樣品 DNA 的濃度。對于 λ-DNA 限制性酶切片段的量可將總上樣量(xμg)除以總 bp數(約50000bp)再乘上該條帶的bp數。

      (說明:①配制多大濃度的瓊脂糖凝膠,要根據被檢的 DNA 分子大小來確定。檢測植物總 DNA、核 DNA 時,使用0.5%的凝膠;檢測大腸桿菌質粒 DNA 時,使用0.8%~1.0%的凝膠。

      ②制備0.5%以下低濃度凝膠時,可先于膠床上制1%的支持膠,待其固化后將低濃度的膠制于其上,以增加凝固強度;

      ③若所提總 DNA 或核 DNA 在0.5%瓊脂糖凝膠上不能形成清晰的條帶,而只是彌散一片,則表明 DNA 已嚴重降解;

      ④需要快速檢測所提的 DNA 樣品時,可采用微型瓊脂糖凝膠電泳,配制1%的瓊脂糖凝膠10mL,倒在小玻璃板或幻燈片上,自然鋪開。梳子用 1mm 厚的有機玻璃制作,齒寬3mm,齒長5mm,齒間距為21nm。點樣量為2~5μL,6~7V/cm電壓電泳1h檢測。

     ?、菀?λ-DNA 限制性酶切片段為標準樣品。

      2、RNA 的變性瓊脂糖凝膠檢測

      (1)試劑

     ?、費OPS 緩沖液(10倍):0.4mol/L嗎啉代丙烷磺酸(MOPS)(pH7.0),0.1mol/L NaAc,10mol/L EDTA。

     ?、谏蠘尤玖希?0%甘油,1mmol/L EDTA,0.4%溴酚藍,0.4%二甲苯藍。

     ?、奂兹?br/>
     ?、芗柞0罚ㄈルx子)。

     ?。?)操作

     ?、賹⒅颇z用具用70%乙醇沖洗一遍,晾干備用。

      ②配制瓊脂糖凝膠

      a.稱取 0.5g 瓊脂糖,置于干凈的 100mL 錐形瓶中,加入 40mL 蒸餾水,微波爐內加熱使瓊脂糖徹/底溶化均勻。

      b.待膠涼至60~70℃,依次向其中加入9mL甲醛、5mL MOPS 緩沖液(10倍)和 0.5μL 溴化乙錠,混合均勻。

      c.灌制瓊脂糖凝膠。

     ?、蹣悠窚蕚?br/>
      a.取 DEPC 處理過的 500μL 離心管,依次加入如下試劑:MOPS 緩沖液(10倍)2μL,甲醛3.5μL,甲酰胺(去離子)10μL,RNA 樣品4.5μL,混勻。

      b.將離心管置于60℃水浴中保溫10min,再置冰上2min。

      c.向管中加入 3μL 上樣染料,混勻。

     ?、苌蠘樱ㄗ⒁恻c上 RNA 分子量標準物)。

      ⑤電泳:電泳槽內加入1倍 MOPS 緩沖液,于 7.5V/mL 的電壓下電泳。

      ⑥電泳結束后,在紫外燈下檢查結果。

      RNA 樣品質量不管是變性凝放電泳還是非變性凝膠電泳,完整的總 RNA 樣品應呈現出三條條帶,為 28SrRNA,18SrRNA,5 SrRNA。其中 8SrRNA 條帶的亮度應約為18SrRNA 8條帶亮度的兩倍,表明 RNA 樣品比較完整,無多少降解。如果兩條帶的亮度反過來了,說明 28SrRNA 已降解成 18S 大小。如無清晰條帶,表明樣品已嚴重降解。如果在點樣槽內或槽附近有熒光區帶,則表明 RNA 樣品中有 DNA 污染。

     ?。?)說明

      ①RNA 電泳可以在變性及非變性兩種條件下進行。非變性電泳使用1.0%~1.4%的凝膠,不同的RNA 條帶也能分開,但無法判斷其分子量。只有在完/全變性的條件下,RNA 的泳動率才與分子量的對數呈線性關系。因此要測定 RNA 分子量時,一定要用變性凝膠。在需快速檢測所提總 RNA 樣品完整性時,配制普通的1%瓊脂糖凝膠即可。

     ?、谥参锟?RNA 中的 28SrRNA 及 18SrRNA 在變性凝膠上的遷移率相當于分子量 5.1kb 及2.0kbRNA 的遷移率。


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